誘導培養基和增殖培養基的配制需基于植物種類、外植體類型及實驗目標進行精準設計，但其核心流程一致：?以合適的基礎培養基為載體，添加特定比例的植物生長調節劑，并嚴格控制理化條件。以下是系統性配制方法：
一、通用配制流程（適用于大多數植物組織培養）
無論誘導或增殖階段，培養基配制均遵循以下步驟：
計算與稱量
根據目標培養基配方，精確稱取大量元素、微量元素、鐵鹽、維生素、蔗糖、瓊脂及植物激素。
溶解與混合
將各成分依次加入約2/3體積的蒸餾水中，加熱攪拌至完全溶解（瓊脂需加熱熔化）。
調節pH值
使用0.1 mol/L NaOH或HCl將培養基pH調整至5.8（多數植物適宜范圍為5.6–6.0）。
定容與分裝
加蒸餾水定容至所需體積，分裝入三角瓶或試管中。
加塞包扎與滅菌
用棉塞封口，外包牛皮紙，采用高壓蒸汽滅菌（121℃、0.103 MPa，維持15–20分鐘）。
無菌檢查與保存
滅菌后于37℃恒溫培養24–48小時確認無菌，隨后置于2–8℃避光保存備用。
關鍵提示：激素應在滅菌前加入，但對熱敏感的物質（如某些抗生素）可在冷卻至約60℃時再添加。
二、誘導培養基的特異性配制要點
誘導培養基的核心是?啟動細胞脫分化或器官發生，常用于外植體初代接種。
常見配方結構：
基礎培養基：MS培養基最常用，營養全面。
植物激素組合：
細胞分裂素（如6-BA）：0.5–2.0 mg/L，促進芽原基形成；
生長素（如NAA或2,4-D）：0.1–0.5 mg/L（誘導芽），或更高濃度用于愈傷組織誘導。
附加成分：蔗糖30 g/L，瓊脂6–7 g/L（固體培養基）。

三、關鍵差異總結

實踐建議：可通過預實驗優化激素配比，結合外植體響應動態調整方案。
四、增殖培養基的特異性配制要點
增殖培養基旨在?高效擴增已形成的不定芽或叢生芽，強調繁殖系數與遺傳穩定性。
常見配方結構：
基礎培養基：MS或WPM，部分植物使用1/2MS以降低鹽分抑制。
植物激素組合：
細胞分裂素（如6-BA）：濃度?高于誘導階段?（如3.0–4.0 mg/L），強烈促進腋芽萌發；
生長素（如NAA）：濃度?低于誘導階段（如0.1 mg/L），避免過度生根或愈傷化。
可選添加物：活性炭（0.02%）用于吸附有害代謝物，提高芽質量。